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La thoracoscopie dans le diagnostic et le traitement des tamponnades chez le chien

thoracoscopie-chien
Auteurs : Dr S. LIBERMANN, Dr C. BILLE
La thoracoscopie apporte une avancée certaine pour déterminer la cause de l’épanchement, ainsi qu’une diminution de la morbidité postopératoire après péricardectomie.
 

Les épanchements péricardiques en chiffre

Les épanchements péricardiques chez le Chien peuvent avoir différentes origines : cinquante-sept pour cent sont d’origine tumorale (hémangiosarcome, chémodectome, mésothéliome) [1], 19 % sont d’origine idiopathique, 14 % sont provoqués par une cardiopathie et 10 % sont la conséquence de troubles divers (traumatisme, infection, syndrome urémique...).
Les races atteintes le plus fréquemment sont le Golden Retriever, le Berger Allemand, le Saint-Bernard, les chiens croisés et le Labrador Retriever [1].
Chez le Berger Allemand, 50 % des épanchements péricardiques sont d’origine tumorale [2].
Le Saint-Bernard et le Golden Retriever semblent au contraire prédisposés aux épanchements idiopathiques.
Une origine tumorale à la collection péricardique est plus souvent mise en évidence chez les races de petite taille et de taille moyenne [2].



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De l’épanchement péricardique à la tamponnade : difficultés diagnostiques


Le tableau clinique varie peu en fonction de l’étiologie. Dans tous les cas, lorsque la pression exercée par le liquide d’épanchement dans le sac péricardique atteint environ 20 mmHg, l’oreillette droite n’a plus la possibilité de se remplir. Cela conduit à une insuffisance circulatoire droite par défaut de remplissage : c’est la tamponnade.


Les signes cliniques

Les signes cliniques les plus fréquemment rencontrés sont des bruits cardiaques assourdis, une faiblesse, la présence d’un liquide d’ascite et une intolérance à l’effort [2].
L’examen électrocardiographique est peu sensible pour diagnostiquer un épanchement péricardique [3].
Les radiographies thoraciques montrent le plus souvent une cardiomégalie [2,3,4].


L’échographie cardiaque est l’examen de choix

Elle permet d’objectiver la présence d’une tamponnade en visualisant un défaut de remplissage du cœur droit. Elle doit cependant être considérée comme tout examen complémentaire, avec cette particularité que ses sensibilité et spécificité dépendent du manipulateur. Le risque de conclure à tort à la présence d’une masse péricardique ou au contraire à ne pas visualiser une tumeur reste élevé, même pour les imageurs les plus expérimentés.


L’examen cytologique ne permet pas d’exclure une tumeur

L’examen cytologique du liquide d’épanchement peut également être à l’origine de nombreuses erreurs diagnostiques. Plusieurs études ont montré [5,6] que l’analyse cytologique du liquide d’épanchement ne permet de suspecter une tumeur que chez 40 % des animaux atteints de mésothéliome (faux négatifs). De plus, des cellules mésothéliales activées dont l’aspect est compatible avec une origine tumorale ont été identifiées chez tous les animaux atteints de mésothéliomes, ainsi que chez 60 % des animaux dont l’épanchement était d’origine idiopathique (faux positifs) ; l’analyse cytologique du liquide d’épanchement ne permet pas d’exclure une origine tumorale dans 89 % des cas (faux positifs).

En résumé, déterminer la cause d’une tamponnade nécessite souvent le recours à différents examens (multiples échocardiographies, analyses cytologiques, analyses histopathologiques), dont les résultats doivent être confrontés systématiquement aux données de l’anamnèse et à l’évolution clinique.

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Photo 1A. Échographie cardiaque avant péricardiocentèse : coupe longitudinale droite 4 cavités.


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Photo 1B. Échographie cardiaque après péricardiocentèse : coupe longitudinale droite 4 cavités. Noter la disparition de l’épanchement. 

VG : ventricule gauche, AG : auricule gauche, EP : épanchement péricardique. AB


Un traitement de l’urgence, puis si possible chirurgical

La péricardiocentèse

C’est le traitement d’urgence d’un épanchement péricardique [2,4,6]. Elle permet de stabiliser l’état cardiovasculaire de l’animal et d’obtenir du liquide, dont l’analyse constitue une avancée diagnostique.

La péricardectomie

Cependant, 40 % des épanchements d’origine idiopathique récidivent [2]. Après deux récidives, il est recommandé d’avoir recours à une péricardectomie : l’analyse histologique du péricarde reste l’examen le plus fiable pour confirmer l’origine de l’épanchement. Pour cela, la chirurgie mini-invasive permet une meilleure gestion postopératoire et améliore la récupération [6].

Un traitement du mésothéliome par chimiothérapie a été décrit [7]. Il repose sur l’administration de cisplatine par voie intrathoracique, associée à la doxorubicine.

Une bonne gestion médicale ou chirurgicale des tamponnades permet dans la plupart des cas d’obtenir une guérison ou une rémission longue : la durée de survie dépend avant tout de la cause de l’épanchement [2-4,8,9].
Les animaux atteints d’hémangiosarcome ont une durée moyenne de survie de 1 à 3 mois [10]. Les chémodectomes évoluent souvent lentement, permettant une survie moyenne de 661 jours chez les animaux ayant subi une péricardectomie [11]. La médiane de survie des animaux atteints de mésothéliome et ayant subi une péricardectomie est de 13,6 mois. Soixante-douze pour cent des animaux atteints d’épanchement péricardique d’origine idiopathique étaient vivants 18 mois après le diagnostic [10].

 

La péricardectomie thoracoscopique en pratique



Rétablir un remplissage cardiaque droite avant intervention

Les animaux sont vus entre 5 et 15 jours après la ponction d’une quantité maximale de liquide péricardique.
Cet intervalle permet d’assurer un drainage médical complet de l’ascite après le rétablissement du remplissage cardiaque droit normal, et ainsi de permettre une amplitude de mouvement optimale du diaphragme avant l’intervention.
Dans ces conditions, si la fonction cardiaque est effectivement normalisée le jour de l’anesthésie générale, le patient ne dépasse pas le niveau II dans la classification ASA (American Society of Anesthesiologists) , ce qui permet une conduite anesthésique plus aisée.
La prise en charge pré-opératoire de la douleur est nécessaire, elle peut associer des morphiniques (chlorhydrate de morphine 0,2 mg/kg IV, 30 minutes pré-opératoires ; fentanyl 5-10 µg/kg/h administré en per-opératoire au pousse seringue), des anti-inflammatoires non- stéroïdiens (AINS) ou stéroïdiens (AIS), des 2-agonistes.

Une prise en charge immédiate de la fonction respiratoire est nécessaire

Une ventilation mécanique est réalisée dès l’induction anesthésique; elle est monitorée par suivi de la capnographie, afin de maintenir une pCO 2 autour de 35 mmHg.
L’amplitude respiratoire est volontairement limitée avec une pression d’insufflation inférieure à 10 cm d’eau; la fréquence respiratoire est donc élevée afin de limiter l’augmentation de la capnie.
La faible amplitude de mouvement des poumons lors de l’insufflation facilite le passage des instruments dans la cavité thoracique.
Le maintien du circuit de ventilation en pression expiratoire positive minimale de 5 cm d’eau est souhaitable.
Durant une anesthésie générale, et particulièrement lorsque le vide pleural est modifié, certains alvéoles ne se développent plus et cloisonnent un volume pulmonaire non fonctionnel.
Ces alvéoles étant recrutés en fin d’expiration, la conservation d’une pression positive permanente dans le circuit d’anesthésie limite ce phénomène.

Préparation du site opératoire

Les deux hémithorax sont tondus et préparés aseptiquement, afin de permettre une conversion rapide si elle est nécessaire.
Le chien est placé en décubitus dorsal, la tête très discrètement en position proclive.
Le drapping est classique; les deux hémithorax sont protégés par un jersey afin de garantir l’asepsie même si une conversion rapide est nécessaire.


Mise en place du thoracoscope

La peau est incisée en arrière du processus xiphoïde, 0,3 mL de bupivacaïne (Marcaïne ® [H]) sont injectés dans le muscle, puis une chemise de 10 mm munie d’un robinet est mise en place aidée d’un mandrin à garde mousse (PHOTO 2) .

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Photo 2. Mise en place du canal optique à l’aide d’une pointe trocart mousse.

Le mandrin est orienté légèrement vers le bas, afin de pénétrer l’hémithorax droit ou gauche, et avec un angle de 30° environ avec l’axe sternal afin d’éviter le cœur.
Une fois en place, le mandrin est retiré, le robinet est ouvert afin de créer un pneumothorax qui permettra de ménager une zone de travail entre le poumon et la paroi costale.
Une optique de 10 mm, 0°, est ensuite introduite dans la chemise ; l’hémithorax choisi est visité.    
Sous contrôle endoscopique, un canal opérateur de 5 mm, muni d’un trocart, est introduit entre la 8e et la 9e côte du même côté, dans le quart ventral [8] (PHOTO 3) , puis un second peut être placé si nécessaire entre la 5e et la 6e . A chaque fois, un bloc à la Marcaïne ® [H] est réalisé, afin de limiter la douleur postopératoire.

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Photo 3. Mise en place d’un canal opérateur à l’aide d’un suivi visuel.

La péricardioscopie

Une paire de ciseaux de Metzenbaum est ensuite introduite dans le canal opérateur le plus caudal, et utilisée afin de réaliser la section du médiastin sur toute sa longueur (PHOTO 4) .

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Photo 4.
Ponction du médiastin ventralement au sac péricardique.

Cette étape rend l’hémithorax controlatéral accessible pour l’optique et les instruments cœlio-chirurgicaux. Un canal opérateur est placé de ce côté entre la 8e et la 9e côte (PHOTO 5).

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Photo 5. Mise en place du second canal opérateur.


Une pince clamp est introduite par la porte antérieure ; elle permet de saisir le sac péricardique, et de le surélever. Les ciseaux de Metzenbaum sont utilisés pour ponctionner le sac. Puis, l’ouverture est poursuivie aux ciseaux vers l’avant et vers l’arrière (PHOTO 6) , jusqu’à ce qu’une fenêtre péricardique de 5 cm de côté soit retirée (PHOTO 7) .

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Photo 6.
Ponction du sac péricardique.

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Photo 7.
Dissection et extraction du sac péricardique.

La pince clamp est ensuite utilisée pour surélever un bord de la fenêtre et l’optique est introduite dans le sac péricardique afin de réaliser une péricardioscopie la plus complète possible.
Les deux auricules sont visualisés (PHOTO 8) , un hémangiosarcome est recherché sur l’auricule droite car il s’agit de sa localisation la plus fréquente.
La visualisation peut être améliorée en gardant la porte xiphoïdienne et en utilisant une optique à 30°, 70° voire 90°.


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Photo 8.
Exploration  visuelle du contenu du  sac péricardique.


La péricardectomie

Le sac péricardique réséqué est retiré par une porte intercostale et prélevé pour examen histopathologique.
L’intégralité de la face interne du sac péricardique visualisé, une biopsie supplémentaire peut également être pratiquée si nécessaire à l’aide d’une curette. 
Une masse sur un auricule peut également être retirée entièrement ou biopsiée par voie  thoracoscopique en utilisant une pince endo  GIA ® [H].
Le choix de la taille de la fenêtre péricardique est délicat : une taille trop importante expose au risque de hernie cardiaque à travers la brèche, une taille trop petite induit une récidive possible de l’épanchement après obstruction.  La taille de 5 cm semble la mieux adaptée [6].
Une résection subtotale du péricarde a également été décrite ; elle est possible lors de  diagnostic de certitude d’une origine idiopathique. 

Postopératoire immédiat

Un drain thoracique est enfin mis en place  dans l’un des deux hémithorax, puis l’extrémité libre du drain est conduite à l’aide d’un clamp dans l’hémithorax opposé en prenant garde à ne pas le couder. 
En postopératoire, le péricarde drainera facilement dans le thorax et le liquide péricardique  sera récupéré par le drain. 
Une aspiration continue est préférable si elle  peut être maintenue 12 heures après l’intervention.
Un lavage du drain toutes les 2 heures associant du chlorhydrate de morphine et un anesthésique local de longue durée (bupivacaïne) est  réalisé. Le drain est retiré entre 12 et 24 heures  après l’intervention.
L’animal peut être rendu à ses propriétaires rapidement, la gestion de la douleur ne dépassant généralement pas 48 heures.

Conclusion

- L’approche permise par la chirurgie mini-invasive dans l’exploration des affections  thoraciques est pertinente ; elle associe les avantages d’une exploration visuelle directe et  de la réalisation aisée de biopsies si nécessaire.
- L’analyse histopathologique du myocarde améliore la sensibilité diagnostique tout en réalisant, dans le même temps, le traitement chirurgical.
- Elle évite un traitement délabrant comme la thoracotomie intercostale ou la sternotomie à forte morbidité. Le confort de l’animal permet de le rendre très rapidement  à ses propriétaires.
- Une gestion chirurgicale mini-invasive est plus facile à proposer en cas d’échec du traitement médical ou dans un but diagnostique.

 

A LIRE...

1. Berg J, Wingfield W (1984).  Pericardial effusion in the dog :  A review of 42 cases. J Am Anim  Hosp Assoc 20 : 721-30.

2. Stafford Johnson M et coll  (2004). A retrospective study  of clinical ? ndings, treatment  and outcome in 143 dogs with  pericardial effusion. J Small Anim  Pract 45 : 546-52.

3. Stepien RL et coll (2000).  Idiopathic or mesotheliomarelated pericardial effusion : clinical  ? ndings and survival in 17 dogs  studied retrospectively. J Small  Anim Pract 41 : 342-7.

4. Mellanby RJ, Herrtage ME  (2005). Long-term survival of 23  dogs with pericardial effusions. Vet  Rec 156 : 568-71.

5. Sisson D et coll (1984).  Diagnostic value of pericardial ? uid  analysis in the dog. J Am Vet Med  Assoc 184 : 51-5.

6. Dupré GP et coll (2001).  Thoracoscopic pericardectomy  performed without pulmonary  exclusion in 9 dogs. Vet Surg 30 :  21-7.

7. Closa JM et coll (1999).  Pericardial mesothelioma in a  dog : long-term survival after  pericardiectomy in combination  with chemotherapy. J Small Anim  Pract 40 : 383-6.

8. Shaw S, Rush J (2007).  Canine pericardial effusion :  pathophysiology and cause.  Compend Cont Educ Pract Vet 29 :  400-4.

9. Shaw SP, Rush JE (2007).  Canine pericardial effusion :  diagnosis, treatment, and  prognosis. Compend Cont Educ  Vet 29 : 405-11.

10. Aronsohn MG, Carpenter JL  (1999). Surgical treatment of  idiopathic pericardial effusion in  the dog : 25 cases (1978-1993).  J Am Anim Hosp Assoc 35 : 521-5.

11. Vicari E et coll (2001). Survival  times of and prognostic indicators  for dogs with heart-base masses :  25 cases (1986 – 1999). J Am Vet  Med Assoc 219 : 485–7.

 

 


Auteurs : S. LIBERMANN, C. BILLE
Centre Hospitalier Vétérinaire des Cordeliers
29 avenue Joffre 
77100 Meaux
www.chvcordeliers.com

 

 

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